Selles: cultures , recherche de parasites, d’oxyures, recherche de sang occulte

Extrait de CPR-PON-27 SELLES: Cultures , Recherche de Parasites, d’Oxyures,  Recherche de sang occulte, version 7, mise à jour 2014-08-29

Fomulaire – Prescription et Instructions analyses de selles

PROCÉDURE

Procédure générale pour recueillir les selles:

  • Utiliser un contenant à grande ouverture propre ou un papier plastique pour recueillir les selles, ou directement dans la couche ou la culotte d’incontinence. Ne pas recueillir dans l’eau de la cuvette
  • Éviter la contamination par l’urine (sauf dans la couche ou la culotte d’incontinence)
  • Ne pas utiliser de laxatif ou de suppositoire pour expulser les selles
  • Ne pas recueillir les selles 7 jours suivant un examen baryté
  • Utiliser la cuillère soudée dans le couvercle  pour déposer la selle dans le contenant approprié
  • Prévenir les parents de jeunes enfants que les milieux de conservation sont des produits toxiques. Ces informations sont indiquées sur chaque contenant

Particularités à respecter selon l’agent recherché:

2.1       Culture routine 1 ou 2 (E.Coli, Salmonelle, Shigelle, Campylobacter)

  • Prélever chaque spécimen à des jours différents,                          intervalle de 24 heures entre deux spécimens de même nature
  • Utiliser un milieu de transport Cary-Blair (liquide ROSE)
  • Respecter la quantité indiquée par la ligne « plein », bien mélanger
  • Conserver le spécimen au réfrigérateur pour un maximum de 24 heures

2.2      Recherche de Clostridium Difficile ou de Rotavirus

  • Faire la recherche de C.Difficile d’emblée chez les patients hospitalisés depuis plus de quatre jours et/ou sur demande
  • Faire la recherche de Rotavirus d’emblée chez les enfants de moins de 5 ans des mois de  janvier à mai
  • Déposer l’échantillon de selle dans un contenant stérile sec (environ 1 cuillère à thé)
  • Conserver au réfrigérateur pour un maximum de 24 heures
  • Laisser à température ambiante un maximum de 2 heures pour le transport    au centre de prélèvements

Parasite

2.3       Recherche de parasites diarrhée parasitaire, test de première ligne, inclus la recherche de Cryptosporidium et Giadia.

  • Déposer l’échantillon dans un contenant stérile sans fixateur.
  • Le spécimen doit parvenir au laboratoire conservé à 4◦C en moins de 48 heures.
  • Bien que les spécimens reçus avec un fixateur de type Cary-Blair ou SAF seront acceptés, leur usage n’est pas encouragé.

2.4       Recherche de Protozoaires

Réservée aux indications cliniques suivantes :

-Recherche de Cystoisospora, Cyclospora, Microsporidium

-Recherche d’Entamoeba histolytica

  • Pour le 1er prélèvement, Déposer l’échantillon dans le milieu de transport SAF (liquide clair)  jusqu’à la ligne indiquant plein. Retourner le contenant pour bien mélanger.
  • Le 2e prélèvement nécessite un prélèvement déposé simultanément dans un contenant sec et stérile (10 ml) et un contenant SAF (liquide clair). Si les échantillons sont rapportés le jour même: conserver au réfrigérateur. Si les échantillons sont rapportés le lendemain: conserver le contenant sec au congélateur et le contenant SAF au réfrigérateur.
  • Lorsque le 2e prélèvement est effectué, vous avez 24 h pour rapporter les spécimens au centre de prélèvement.

2.5        Recherche d’helminthes

Réservée aux indications cliniques suivantes :

– Immunosuppression

– Infection à helminthes suspectée

– Patient immigrant ou réfugié

– Recommandé par un microbiologiste-infectiologue

  • Deux spécimens sur deux jours différents sont nécessaires. Les deux échantillons doivent être rapportés en même temps.
  • Déposer l’échantillon dans le milieu de transport SAF (liquide clair)  jusqu’à la ligne indiquant plein. Retourner le contenant pour bien mélanger
  • Les spécimens peuvent être conservés à température ambiante. La réfrigération n’endommage pas les spécimens
  • Compléter et rapporter les spécimens au centre de prélèvements sur une période maximale de 7 jours

Recherche d’oxyures

  • Utiliser une languette de plastique adhésive (disponible au centre de prélèvements). Placer le côté collant à l’extérieur et maintenir par un abaisse-langue en bois
  • Recueillir les œufs en écartant les fesses et en appuyant fermement la surface collante sur la région anale
  • Prélever tôt le matin avant toute activité, avant de se lever, avant l’utilisation de la toilette ou les soins d’hygiène
  • Remettre la bandelette dans son contenant et bien visser le couvercle            
  • Le spécimen doit parvenir au laboratoire à la température ambiante en moins de 24 heures

Recherche de sang occulte dans les selles

Instructions en annexe, Matériel disponible au centre de prélèvement

RÉFÉRENCE(S)

Clinical Microbiology Procedures Handbook par Henry D. Isenberg American Society for Microbiology / Washington D.C.1992 Section 1.1 ISBN 1-55581-038-1
Manual of Clinical Microbiology par Patrick R. Murray ASM Press /Washington D.C. 1999 ISBN 1-55581-126-4
OPTMQ Règles de pratique MICROBIOLOGIE Juin 2006  www.optmq.org

Annexe 1

1 pot SAF​

 Analyse demandée Contenant adéquat REQUIS Délai de conservation maximal (réfrigéré)
 Culture (routine) 1 ou 2 milieu Cary-Blair (rose) 24 hres
 Escherichia Coli (E.Coli) milieu Cary-Blair (rose) 24 hres
 Salmonelle, Shigelle, Campylobacter milieu Cary-Blair (rose) 24 hres
 Clostridium Difficile (toxine) Contenant stérile et sec 24 hres
 Rotavirus (sur demande) ** + janvier à mai, enfants < 5 ans** Contenant stérile et sec 24 hres
 diarrhée parasitaire Contenant stérile et sec 48 hres
 Protozoaires1er jour (1 pot SAF) +

2e jour (1 pot sec et 1 pot SAF)

 24 hres
helminthes 2 pot SAF

(sur deux jours différents)

1 semaine(Tº ambiante)
 Recherche de sang (RSOSi) ** test recommandé** Contenant et instructions 48 heures
 Recherche d’oxyures (oeufs) Contenant stérile avec bandelette adhésive le jour même (nb. Ne pas refroidir)